タンパク質濃度計算ツール
タンパク質濃度を推定する2つの方法。(1) Beer–Lambert則: タンパク質のモル吸光係数と分子量を入力してA280をmg/mLに変換。(2) 標準的な仮定1 A280 = 1 mg/mLを使用し、混合タンパク質試料に対応します。計算機はA260/A280純度メモも表示します。
計算ツール
読み値を入力して計算すると濃度が表示されます
濃度
c = A280 × dilution ÷ E(1 mg/mL) · c(M) = A280 × dilution ÷ ε
Beer–ランバート則による定量:280 nmの吸光度はタンパク質の吸光係数を介して濃度に比例します。モル濃度モードでは分子量を用いてmg/mLにも換算します。
この計算について
計算の考え方
Proteins absorb at 280 nm because of aromatic residues (tryptophan, tyrosine, and to a lesser extent cystine). For a purified protein with a known molar extinction coefficient, Beer–Lambert gives an accurate concentration; for a mixed or unknown sample, the heuristic 1 A280 = 1 mg/mL is a usable estimate.
なぜ使うのか
Almost every downstream application — gel loading, dilution to a working stock, assay setup — needs a protein concentration. A280 is the fastest available measurement, but the assumption you make (1 mg/mL per A280 vs. Beer–Lambert) drives the accuracy of every result downstream.
この計算ツールが役立つ理由
A280 readings are often reported in instrument software, but converting them into a usable mg/mL number is where mistakes happen — particularly the missing division by path length or the wrong extinction coefficient. The calculator does the unit bookkeeping and shows both the 1-A280 and Beer–Lambert results side by side.
主な前提条件
- The spectrophotometer was blanked with the same buffer the sample was diluted into.
- For the 1-A280 path, the protein mixture is roughly "average" (e.g. a crude lysate); for purified proteins use the calculated path.
- Path length is 1 cm, or the instrument has been corrected for a different path length.
制限事項
- The 1 A280 = 1 mg/mL assumption fails badly for samples rich in nucleic acids (use A260/A280 subtraction).
- It cannot detect proteins that lack aromatic residues or are present at sub-A280 noise-floor concentrations.
- It does not distinguish folded from denatured protein — the extinction coefficient assumes the folded environment.
計算結果の項目
- 濃度 mg/mL
- Protein concentration in the original (undiluted) sample.
- モル濃度 µM
- Molar concentration — shown in ε + molecular-weight mode.
よくある質問
A280の測定値からタンパク質濃度をどう計算しますか。
本ツールはブランク補正済みA280にBeer–Lambert則を適用します。吸光度を吸光係数で割り、希釈倍率を掛けます。質量係数E(1 mg/mL)を入力すればmg/mLが直接得られ、モル係数εと分子量を入力すればmg/mLとµMの両方が得られます。原液のまま測定した場合は希釈倍率に1を入力してください。
E(1 mg/mL)とモル吸光係数のどちらを使えばよいですか。
実際に手元にある係数を使ってください。E(1 mg/mL)は光路長1 cmにおける1 mg/mL溶液の吸光度なので、それだけで濃度をmg/mLで与えます(例えばBSAは約1.4)。モル係数ε(M⁻¹·cm⁻¹)は分子量(g/mol)も必要で、濃度をµMでも報告するのはこちらのモードです。
A280の値はタンパク質試料の何を測っているのですか。
タンパク質は280 nmの紫外線を主にトリプトファン・チロシン・シスチン残基で吸収するため、吸光度は光路中のタンパク質量に比例します。この関係はそのタンパク質に固有の係数を与えて初めて確定します。だからこそ本ツールはE(1 mg/mL)またはεを求めます。利点は必要量がわずか数µLで済み、試料を下流の実験にそのまま使えることです。
結果にmg/mLとµMの両方が出るのはなぜで、それぞれいつ使いますか。
モルモードで作業すると両方が表示されます。分子量があるため、計算機は質量と物質量を互いに換算できるからです。mg/mLはストックを作業濃度に希釈したりゲルにローディングしたりする実務上の単位で、µMは結合や酵素アッセイなどモル比が実験を左右する場面で重要です。E(1 mg/mL)モードでは分子量を入力していないため、mg/mLのみが報告されます。
A280によるタンパク質濃度を誤らせる要因は何ですか。
核酸汚染はA280を押し上げて計算濃度を高く出すため、試料のA260/A280を確認して必要なら補正してください。高濃度のDTT、イミダゾール、Tritonなど280 nm付近に吸光するバッファー成分も測定値を偏らせるので、同じバッファーでブランクを取ってください。本ツールは光路長1 cmと、対象タンパク質とその還元状態に合った係数を前提とし、汚染補正は独自に行いません。
研究および教育目的でのみご利用ください。臨床判断や診断には使用できません。重要な用途に使う前に、必ず計算結果を独立して確認してください。